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產品名稱••╃││:

五種致瀉性大腸埃希氏菌鑑定試劑盒PCR法

產品型號••╃││: 96T 產品時間••╃││: 2022-04-24
五種致瀉性大腸埃希氏菌鑑定試劑盒PCR法可針對食品·✘▩◕╃、飼料等樣品中的致病微生物的特異核酸片段進行擴增│•☁,儀器實時監測擴增過程中的熒光訊號變化│•☁,自動判讀結果☁✘₪。本產品用於致瀉大腸埃希氏菌的檢測☁✘₪。檢出限為 103 CFU/ml☁✘₪。

產品概述

五種致瀉性大腸埃希氏菌鑑定試劑盒PCR法

u  產品說明

五種致瀉性大腸埃希氏菌鑑定試劑盒PCR法可針對食品·✘▩◕╃、飼料等樣品中的致病微生物的特異核酸片段進行擴增│•☁,儀器實時監測擴增過程中的熒光訊號變化│•☁,自動判讀結果☁✘₪。本產品用於致瀉大腸埃希氏菌的檢測☁✘₪。檢出限為 103 CFU/ml☁✘₪。

    產品組成(96 測試)

222.png

 

   所需儀器

ABI │•☁,BioRad│•☁,TaKaRa PCR 擴增儀│•☁,電泳儀│•☁,凝膠成像儀等電泳配套裝置☁✘₪。使用熒光定量 PCR 儀進行定性判讀時則無需電泳裝置

   自備耗材和儀器

①滅菌 1.5mL 2.0mL 離心管;②冰盒;③移液器0.5-10μL│•☁,10-100μL│•☁,100-1000μL及配套滅菌吸頭;④ 離心機;⑤渦旋混勻器;⑥金屬浴☁✘₪。

   樣品處理

參照《GB4789.6—2016 食品安全國家標準 食品微生物學檢驗致瀉大腸埃希氏菌檢驗》中的操作步驟進行前增菌☁✘₪。建議使用試劑配套細菌基因組 DNA 提取系列產品☁✘₪。

   實驗操作

1.試劑配製(試劑配製區│•☁,放置於冰盒中進行取出各管試劑│•☁,將試劑*解凍│•☁,離心 30s☁✘₪。取 12×(所待檢樣品數+3)PCR 反應管│•☁,按 12 個一組排列並編號│•☁,依次向各管中加入 23μL 12 種反應液☁✘₪。

2.新增模板(樣本製備區│•☁,放置於冰盒中進行向每管反應液中分別加入 2μL 模板(或直接使用無菌吸頭挑取少許待檢菌落至反應管中)☁✘₪。加樣示例••╃││:(有 N 個待測樣品

(N+3)12 個一組的反應管│•☁,按順序第一組 12 管中全部加入 2μL NG-DW│•☁,第二組 12管中全部加入 2μLNG-Ecoli│•☁,第三組 12 管中全部加入 2μL 的樣品 1 模板│•☁,第四組 12 管中全部加入 2μL 的樣品 2 模板│•☁,…│•☁,最後12 管中全部加入 2μL PG-Ecoli☁✘₪。

蓋好 PCR 管蓋後│•☁,渦旋混勻 30s│•☁,離心 1min│•☁,立即進行 PCR 擴增反應☁✘₪。

3.擴增反應(擴增及產物分析區

按下列條件設定擴增反應••╃││:(如需使用熒光法進行檢測請選擇 FAM 通道

PCR 迴圈

熒光收集位點

37

10 分鐘

1 個迴圈

95℃

10 分鐘

1 個迴圈

95℃

30

 

30 個迴圈

63 ℃

30

72℃

90

72℃

5 分鐘

1 個迴圈

 

4.產物電泳(擴增及產物分析區

稱量 4. 0g 瓊脂糖粉│•☁,加入至 200 mL 1×TAE 電泳緩衝液中│•☁,充分混勻☁✘₪。使用微波爐反覆加熱至沸騰│•☁,直到瓊脂糖粉*融化形成清亮透明的溶液☁✘₪。待瓊脂糖溶液冷卻至 60右時│•☁,加入溴化乙錠( EB )至終濃度為 0.5μg/mL│•☁, 充分混勻後│•☁,輕輕倒入已放置好梳子的模具中│•☁,凝膠長度要大於 10cm│•☁,厚度宜為 3mm~5mm☁✘₪。檢查梳齒下或梳齒間有無氣泡│•☁,用一次性吸頭小心排掉瓊脂糖凝膠中的氣泡☁✘₪。當瓊脂糖凝膠*凝結硬化後,輕輕拔出梳子│•☁,小心將膠塊和膠床放入電泳槽中│•☁,樣品孔放置在陰☁✘₪。向電泳槽中加入 1×TAE 電泳緩衝液│•☁,液麵高於膠面 1mm~2mm☁✘₪。將5μL PCR 產物與 1μL 6×上樣緩衝液混勻後│•☁,用微量移液器吸取混合液垂直伸入液麵下膠孔│•☁,小心上樣於孔中;陽性對照的 PCR 反應產物加入到最後一個泳道;第一個泳道中加入 2 μ L 分子量 Marker ☁✘₪。接通電泳儀電源│•☁,根據公式••╃││: 電壓=電泳槽正負極間的距離(cm×5V/cm 計算並設定電泳儀電壓數值;啟動電壓開關│•☁,電泳開始以正負極鉑金絲出現氣泡為準☁✘₪。電泳 30min~45min 後│•☁,切斷電源☁✘₪。取出凝膠放入凝膠成像儀中觀察結果│•☁,拍照並記錄資料☁✘₪。

u  可使用 Gold view·✘▩◕╃、Gal-Rad 等等效的核酸熒光染料替代 EB☁✘₪。

u  推薦使用 DNA Marker••╃││:DL2000 100bp ladder│•☁,等可指示 100bp~1500bp 條帶的 Marker☁✘₪。

    結果分析

1.陰陽性判讀••╃││:

進行電泳檢測時│•☁,需對比 Marker 進行判斷│•☁,當目的靶標對應位置出現單一顯著條帶時可判斷該靶標為陽性; 否則為該靶標檢測為陰性☁✘₪。使用熒光定量 PCR 儀檢測時│•☁,檢測孔Ct≤30 時判斷該孔為陽性;當檢測孔Ct30 時│•☁, 該檢測孔為陰性

示例電泳圖

111.png


2.有效性判讀••╃││:

需同時滿足••╃││:1.空白對照中所有泳道均為陰性;2.陰性對照中 uidA 泳道陽性│•☁,其餘泳道陰性;2.陽性對照中所有泳道陽性│•☁,此時可判斷實驗有效☁✘₪。如無法滿足上述條件│•☁,則實驗無效│•☁,需重複實驗;如重複後結果仍為無效│•☁,請於本公司技術支援聯絡☁✘₪。

3.結果判讀••╃││:

在實驗有效的情況下│•☁,可根據下表進行判讀••╃││:

 

大腸埃希氏菌類別

目標條帶的種類組合

EIEC

ipaH(+)

 

 

uidA

(+/-)

EAEC

aggR│•☁,astA│•☁,pic 中一條或一條以上陽性

EPEC

bfpB│•☁,eae(+│•☁,stx1stx2│•☁,

STEC/EHEC

stx1│•☁,stx2 中一條或一條以上陽性│•☁,eae+/-│•☁,bfpB-)

ETEC

lt│•☁,stp│•☁,sth 中一條或以上陽性

u  97%以上大腸埃希氏菌為 uidA 陽性│•☁,可參考陰性對照中該基因檢測結果判斷擴增效果;

u  當結果判定為EPEC 陽性時│•☁,若 bfpB 靶標為陽性則說明樣品含有典型EPEC;若 bfpB 靶標為陰性則說明樣品為非典型EPEC

當結果判定為STEC/EHEC 陽性時│•☁,若 eae 靶標為陽性則說明樣品含有典型EHEC;若 eae 靶標為陰性則說明樣品為非典型EHEC☁✘₪。


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